桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)桿狀病毒滴度測定全攻略第1頁，共37頁。優(yōu)選桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)桿狀病毒滴度測定全攻略第2頁，共37頁。桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)昆蟲細(xì)胞的培養(yǎng)重組pFastBac質(zhì)粒的構(gòu)建重組Bacmid的產(chǎn)生與鑒定獲得重組桿狀病毒蛋白表達(dá)&病毒擴大第3頁，共37頁。OverviewBac-to-BacBaculovirusExpressionSystem能快速并有效的獲得重組桿狀病毒，其重組是基于供體質(zhì)粒表達(dá)盒與桿狀病毒穿梭載體Bacmid間發(fā)生位點特異性轉(zhuǎn)座。供體質(zhì)粒pFastBac：靶基因位于桿狀病毒特異啟動子下游DH10Bac：桿狀病毒穿梭載體Bacmid+輔助質(zhì)粒第4頁，共37頁。Bac-to-Bac表達(dá)系統(tǒng)的組成和工作原理第5頁，共37頁。Bac-to-Bac表達(dá)系統(tǒng)的組成和工作原理第6頁，共37頁。Expermiantaloutline第7頁，共37頁。InsectCellLines：Sf9orSf21cells——主要用于轉(zhuǎn)染，空斑實驗和滴度測定HighFive?cellsorMimic?Sf9cells——轉(zhuǎn)染效率低，主要用于蛋白表達(dá)Grace'sInsectMediumwithL-glutamineandsupplementedwith（pH6.5）：

3330mg/Llactalbuminhydrolysate

3330mg/Lyeastolate350mg/LNaHCO3

10%heat-inactivatedfetalbovineserum昆蟲細(xì)胞的培養(yǎng)第8頁，共37頁。Atmosphere：air,100%pipettingacrossthemonolayerscrapingcellscrapershittingtheflaskagainstthepalmofyourhandTemperature：27.0—28.0℃Subculturing：Preservation：90%serum,10%DMSO嚴(yán)格程序降溫，-80℃過夜后轉(zhuǎn)移液氮保存。昆蟲細(xì)胞的培養(yǎng)第9頁，共37頁。重組pFastBac質(zhì)粒的構(gòu)建選擇合適的載體

第10頁，共37頁。重組Bacmid的產(chǎn)生第11頁，共37頁。重組Bacmid的鑒定PCR法:pUC/M13ForwardandReverseprimer或者pUC/M13ForwardorReverseprimerandaprimerthathybridizeswithinyourinsertBacmidDNA≥135kb第12頁，共37頁。獲得重組桿狀病毒——轉(zhuǎn)染Sf9cells1.小提好的BacmidDNA，置4℃不超過1周2.轉(zhuǎn)染試劑：Cellfectin?

ⅡReagent3.轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的形態(tài)變化細(xì)胞變大增殖明顯變慢或不增殖裂解脫落融合(VSV/G)或4.收毒，短期內(nèi)4℃避光保存，長期保存分裝后置-80℃第13頁，共37頁。病毒擴增&蛋白表達(dá)擴增病毒：接毒量為0.05—0.1MOI一般情況下，P1代毒滴度大概為1×106—1×107PFU/ml，P2代毒滴度1×107—1×108PFU/ml比如：P1代毒滴度為5×106PFU/ml，T75細(xì)胞瓶的細(xì)胞量2×107cells，那么蛋白表達(dá)：接毒量為1—5MOI第14頁，共37頁。桿狀病毒滴度測定兩種病毒滴度測定方法的比較：空斑實驗法測定滴度依賴于病毒在感染細(xì)胞中的復(fù)制以及感染周邊細(xì)胞形成局灶型病變；而免疫染色法只需要病毒感染靶細(xì)胞并表達(dá)病毒所編碼的蛋白。因此，免疫染色法（infectiousunitsperml,orIFU/ml）測定病毒滴度需要的時間比空斑法（PFU/ml）更短。第15頁，共37頁。BacPAK?RapidTiterKit

本測定方法，以針對桿狀病毒囊膜蛋白gp64的單克隆抗體標(biāo)記被病毒感染的細(xì)胞，然后以HRP-標(biāo)記的二抗與感染細(xì)胞進(jìn)行染色。通過底物顯色，在光學(xué)顯微鏡下計數(shù)感染斑點的數(shù)量，經(jīng)過稀釋倍數(shù)的換算，即可得出病毒的滴度（IFU/ml）。第16頁，共37頁。第17頁，共37頁。注意事項：

細(xì)胞鋪板5×106cells/well，細(xì)胞計數(shù)要準(zhǔn)，臺盼藍(lán)染色，保證細(xì)胞活力≥

95%。2.病毒稀釋要準(zhǔn)，不同濃度之間換槍頭，是確保不同稀釋度孔斑點成10倍關(guān)系的關(guān)鍵。3.整個過程中，輕輕洗板，避免細(xì)胞脫落過多。4.實驗完畢3h后數(shù)斑，效果更佳。5.結(jié)果判定：第18頁，共37頁。疫苗免疫動物后免疫效力評價體液免疫檢測ELISA抗體中和抗體細(xì)胞免疫檢測細(xì)胞因子mRNA水平檢測—qPCR細(xì)胞因子蛋白質(zhì)水平檢測—ELISA淋巴增殖實驗—MTT法第19頁，共37頁。ELISA抗體制備良好的抗原包被ELISA板—純化的蛋白或病毒3.設(shè)置空白孔（不加血清），統(tǒng)計結(jié)果時，所有實驗組的

OD值先減掉背景值，再計算比值和滴度。（1）蛋白質(zhì)與酶標(biāo)板的結(jié)合主要是靠疏水作用的物理吸附，而包被液的PH大于蛋白的PI，有利于蛋白質(zhì)疏水鍵的適當(dāng)暴露。（2）酶標(biāo)板聚苯乙烯表面暴露的主要是C－H鍵，包被液PH大于蛋白PI，使蛋白質(zhì)帶上負(fù)電荷，有利于蛋白質(zhì)與酶標(biāo)板的牢固結(jié)合，提高包被效率。每次包被板子條件一致，4℃16-18h。2.血清樣品不溶血，防止干擾結(jié)果。方陣滴度確定最佳抗原包被濃度。第20頁，共37頁。微量中和實驗技術(shù)中和抗體第21頁，共37頁。中和實驗原理第22頁，共37頁。分類固定病毒—稀釋血清法固定血清—稀釋病毒法（用的很少）用途疾病診斷病毒分離株的鑒定不同病毒株的抗原關(guān)系研究疫苗免疫原性的評免疫血清的質(zhì)量評價測定實驗動物血清中是否存在抗體第23頁，共37頁。材料病毒（1）凍存的病毒不能重復(fù)使用（2）進(jìn)行中和實驗前，需先進(jìn)行病毒滴定（TCID50）的滴定進(jìn)行病毒定量2.血清樣品（1）血清樣品分裝凍存于-20℃，一般不要反復(fù)凍融3次以上。（2）血清樣品不溶血，不長期凍存，以減少對細(xì)胞的毒性。（3）需要有陽性和陰性對照血清，實驗前需56℃滅活30分鐘。3.細(xì)胞和細(xì)胞培養(yǎng)試劑（1）對數(shù)生長期細(xì)胞（2）DMEM/血清/胰酶/抗生素第24頁，共37頁。固定病毒—稀釋血清法將不同稀釋度的血清與固定量的?。?00TCID50、EID50或LD50）混合，適當(dāng)?shù)臈l件下感作一定時間以后，再將血清-病毒混合物接種于敏感細(xì)胞、雞胚或?qū)嶒瀯游?，測定被檢血清阻止組織培養(yǎng)細(xì)胞、雞胚或?qū)嶒瀯游锇l(fā)生病毒感染的能力及其效價。以能保護(hù)50%組織培養(yǎng)細(xì)胞、雞胚或?qū)嶒瀯游锊话l(fā)生病變、感染或死亡的血清最高稀釋倍數(shù)，作為該血清的50%中和效價(PD50)。第25頁，共37頁。第26頁，共37頁。將96孔細(xì)胞培養(yǎng)板放入37℃5%CO2培養(yǎng)箱中作用45min—60min。感作完成后每孔加入100μl細(xì)胞懸液，繼續(xù)置37℃5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)，逐日觀察并記錄結(jié)果，一般要觀察4-5天。結(jié)果計算，按Reed-Muench兩氏法或Karber法進(jìn)行。第27頁，共37頁。第28頁，共37頁。距離比例=(高于50%的保護(hù)率-50%)/(高于50%的保護(hù)率-低于50%的保護(hù)率)=(66.7-50)/(66.7-16.7)=0.33

PD50=-1.299的反對數(shù)=0.05=1/20即1:20稀釋的待檢血清可保護(hù)50%的組織培養(yǎng)細(xì)胞不出現(xiàn)CPE中和效價(PD50)的計算：lgPD50=高于50%保護(hù)率的血清稀釋度的對數(shù)+距離比例×稀釋度對數(shù)的差=-1.2+0.33×(-0.3)=-1.299第29頁，共37頁。固定血清—稀釋病毒法在固定量的血清中，加入等量不同稀釋度的病毒，用對照非免疫血清（對照組）和待檢血清同時進(jìn)行測定，計算每一組的TCID50、EID50或LD50，然后計算中和指數(shù)。第30頁，共37頁。第31頁，共37頁。注意事項：待檢血清需56℃滅活30分鐘。需重復(fù)測定抗體時，血清應(yīng)分裝后凍存，以免反復(fù)凍融。細(xì)胞應(yīng)處于對數(shù)生長期，嚴(yán)禁細(xì)胞過度生長或老化，細(xì)胞活力≥95%。4.牛血清有中和病毒感染力的作用，實驗過程中切勿將細(xì)胞培養(yǎng)液與病毒稀釋液混淆使用。5.病毒與抗血清混合，常規(guī)采用37℃作用1小時。但針對不同耐熱性的病毒，孵育溫度和時間應(yīng)有所增減。6.每份血清做3個生物學(xué)重復(fù)。第32頁，共37頁。細(xì)胞免疫的檢測首先要完成淋巴的分離和體外刺激包括脾淋巴細(xì)胞/外周血單核細(xì)胞的分離

第33頁，共37頁。脾細(xì)胞的分離：

2.將脾臟轉(zhuǎn)入勻漿器中，加少量不完全1640，輕輕研磨。1.處死的小鼠經(jīng)消毒后，放置于泡沫板右側(cè)臥固定，剪開左側(cè)背腹交界處皮膚，分三套鑷子/剪刀無菌取脾臟3.靜置，吸上清液入15ml離心管中，1000rpm×10min。4.棄上清，加入5ml的8.3g/lNH4Cl，靜止5min(去除紅細(xì)胞)，1000rpm×10min。5.棄上清，用不完全RPMI-1640洗滌，1000rpm×10min。6.細(xì)胞計數(shù)，臺盼藍(lán)染色，要求細(xì)胞活性應(yīng)在95%以上。7.調(diào)整濃度為4×106cells/ml。第34頁，共37頁。外周血單核細(xì)胞的分離

：

第35頁，共37頁。細(xì)胞因子的定量PCR檢測：

（1）于24孔板中加入適量的相關(guān)刺激原（basedoninvitrodose-responsestudies），然后將濃度為4×106cells/ml的細(xì)胞懸液加至各孔內(nèi)，每孔1ml。（2）置37℃，5%CO2溫箱中培養(yǎng)20h，提取細(xì)胞總RNA并測定RNA濃度和純度。（3）取0.5μgRNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄