ICS65.020.30

CCSB44

44

廣東省地方標準

DB44/T2337—2021

實驗動物病原菌PCR定性分析

LaboratoryanimalsQualitativeanalysisofpathogenicbacteriawithpolymerasechain

reactionmethod

2021-10-18發(fā)布2022-01-18實施

廣東省市場監(jiān)督管理局發(fā)布

DB44/T2337—2021

目次

前言.................................................................................II

1范圍...............................................................................1

2規(guī)范性引用文件.....................................................................1

3術語和定義.........................................................................1

4縮略語.............................................................................1

5原理...............................................................................2

6主要設備和材料.....................................................................2

7試劑...............................................................................2

8方法...............................................................................3

9結果...............................................................................6

10防止交叉污染的措施................................................................7

附錄A（規(guī)范性）溶液的配制...........................................................8

附錄B（規(guī)范性）引物及探針序列......................................................10

參考文獻.............................................................................13

I

DB44/T2337—2021

前言

本文件按照GB/T1.1—2020《標準化工作導則第1部分：標準化文件的結構和起草規(guī)則》的規(guī)定

起草。

請注意本文件的某些內容可能涉及專利。本文件的發(fā)布機構不承擔識別專利的責任。

本文件由廣東省科學技術廳提出并組織實施。

本文件由廣東省實驗動物標準化技術委員會（GD/TC93）歸口。

本文件起草單位：廣東省實驗動物監(jiān)測所。

本文件主要起草人：閔凡貴、潘金春、黃樹武、王靜、袁文、何麗芳、陳梅玲、張鈺、黃韌。

II

DB44/T2337—2021

實驗動物病原菌PCR定性分析

1范圍

本文件規(guī)定了實驗動物病原菌的PCR定性分析方法。

本文件適用于實驗動物病原菌核酸定性分析。

2規(guī)范性引用文件

下列文件中的內容通過文中的規(guī)范性引用而構成本文件必不可少的條款。其中，注日期的引用文件，

僅該日期對應的版本適用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改單）適用于本

文件。

GB/T6682分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法

GB/T14926實驗動物微生物檢測方法

GB19489實驗室生物安全通用要求

GB/T19495.2轉基因產品檢測實驗室技術要求

3術語和定義

下列術語和定義適用于本文件。

聚合酶鏈式反應polymerasechainreaction，PCR

體外酶催化合成特異DNA片段的方法，模板DNA先經高溫變性成為單鏈，在DNA聚合酶作用和適宜的

反應條件下，根據模板序列設計的兩條引物分別與模板DNA兩條鏈上相應的一段互補序列發(fā)生退火而相

互結合，接著在DNA聚合酶的作用下以四種dNTP為底物，使引物得以延伸，然后不斷重復變性、退火和

延伸這一循環(huán)，使欲擴增的基因片段以幾何倍數擴增。

實時熒光聚合酶鏈式反應real-timePCR，實時熒光PCR

實時熒光PCR方法是在普通PCR的基礎上，在反應體系中加入特異性熒光探針，利用熒光信號積累實

時報告整個PCR進程，通過讀取每次循環(huán)反應中的熒光發(fā)射信號，間接反映了PCR擴增的目標基因的量，

最后通過擴增曲線對未知模板進行定性或定量分析。

Ct值cyclethreshold

實時熒光PCR反應中每個反應管內的熒光信號達到設定的閾值時所經歷的循環(huán)數。

4縮略語

下列縮略語適用于本文件。

DNA脫氧核糖核酸（deoxyribonucleicacid）

EDTA乙二胺四乙酸（ethylenediaminetetraaceticacid）

1

DB44/T2337—2021

PBS磷酸鹽緩沖液（phosphatebufferedsaline）

RNA核糖核酸（ribonucleicacid）

TAE三羥甲基氨基甲烷-乙酸-乙二胺四乙酸緩沖液（tris-acetate-EDTA）

5原理

用合適的方法提取樣本中的DNA，分別針對病原菌16sRNA或其他保守的基因設計特異的引物探針

序列，通過PCR對模板進行擴增，根據PCR反應結果分析該樣品中是否含有某種病原菌。

6主要設備和材料

PCR儀。

實時熒光PCR儀。

電泳儀。

凝膠成像分析系統(tǒng)。

高速冷凍離心機。

普通離心機。

恒溫孵育器。

漩渦振蕩器。

組織勻漿器。

微量核酸定量儀。

生物安全柜。

PCR超凈工作臺。

冰箱（-20℃）。

微量移液器：0.1μL～2μL，1μL～10μL，10μL～100μL，100μL～1000μL。

滅菌離心管（1.5mL、2mL、5mL、15mL），滅菌吸頭（10μL，200μL，1mL），滅菌PCR擴

增反應管（0.2mL，八連管或96孔板）。

聚乙烯薄膜袋：90mm×150mm自封袋，使用前紫外滅菌20min。

采樣工具：剪刀、鑷子和滅菌棉拭子等。

7試劑

以下所用的試劑除特別注明者外均為分析純，所用的水為雙蒸水或去離子水，應符合GB/T6682

所規(guī)定一級水的要求。所有涉及分子生物學操作的水均為無DNA酶、無RNA酶水。

滅菌PBS。配制方法見附錄A。

DNA抽提試劑：基因組DNA提取試劑盒DNeasyBlood&TissueKit或其他類似產品。

注：DNA提取試劑盒是由Qiagen公司提供的DNeasyBlood&TissueKit。給出這一信息是為了方便本文件使用者，

并不表示對這一產品的認可。亦可使用其他類似的DNA提取試劑盒進行。

無水乙醇。

PCR試劑：PremixTaqTM（Version2.0plusdye）、PremixExTaq?（ProbeqPCR）或其他類

似產品。

2

DB44/T2337—2021

注：以上PCR試劑是是由Takara公司提供的商品試劑盒，是本文件適合的市售產品的使用實例，給出這一信息是為

了方便本文件使用者，并不表示對這一產品的認可。亦可使用其他類似的PCR試劑。

DNA相對分子質量標準：100bp～2000bp。

50×TAE電泳緩沖液，配制方法見附錄A。

溴化乙錠：10mg/mL，配制方法見附錄A，或其他類似產品。

1.5%瓊脂糖凝膠，配制方法見附錄A。

引物和探針：根據附錄B中表B.1和表B.2的序列合成引物和探針，引物和探針加入無DNA酶、

無RNA酶水配制成10μmol/L儲備液，置于-20℃保存，使用的工作液應當置于4℃存放，避免引物

或探針由于反復凍融出現(xiàn)降解。

8方法

生物安全措施

對于可能潛在人獸共患病的樣本，應在生物安全二級及以上實驗室進行操作，采樣應在生物安全柜

中進行。實驗操作及處理按照GB19489的規(guī)定，由具備相關資質的工作人員進行相應操作。

采樣及樣本的處理

采樣過程中樣本不得交叉污染，采樣及樣本前處理過程中須戴一次性手套。采樣及樣本處理過程操

作人員應做好個人防護。

8.2.1臟器組織

剖檢，無菌采集動物臟器，剪取待檢樣本0.5g～2g，加入5倍體積滅菌PBS，使用勻漿器充分勻漿

1min～2min，然后將組織懸液在4℃，8000g離心10min，取上清液轉入另一無菌5mL離心管中，

編號備用。

8.2.2細菌培養(yǎng)物

參照國標GB/T14926對臨床樣本進行細菌分離培養(yǎng)，獲得可疑陽性培養(yǎng)物，刮取約1mm2～3mm2菌

苔，加入500μL無菌水混勻，煮沸后，8000g離心1min，取上清液直接進行PCR。

8.2.3盲腸內容物或糞便

無菌采集動物盲腸內容物或糞便，取待檢樣本0.5g～2.0g，加入5倍體積滅菌PBS，使用勻漿器充

分勻漿1min～2min，8000g離心5min，取上清液取離心上清液轉入另一無菌離心管中，編號備用。

8.2.4血液樣本

無菌采集動物血液0.2mL～0.5mL，加入檸檬酸鈉或EDTA抗凝管中，輕輕顛倒混勻3次～5次，編號

備用。

8.2.5拭子取樣

對活體動物取樣可采集肛拭子、咽喉拭子、泄殖腔拭子、鼻拭子、皮膚拭子等，浸泡于3mL無菌PBS

中5min～10min，充分混勻后，4℃，8000g離心5min，取上清液轉入另一無菌5mL離心管中，編

號備用。

3

DB44/T2337—2021

8.2.6飼料、墊料和飲水

飼料、墊料：取約5g～10g飼料和墊料置于50mL無菌離心管中，加入3倍體積滅菌PBS（飼料和墊

料需全部浸泡于液體中）。密封后浸泡5min～10min，充分混勻，將混懸液轉移至15mL無菌離心管，

4℃，8000g離心5min，取上清液轉入另一無菌5mL離心管中，編號備用。

飲水：取200μL～1000μL實驗動物飲水直接轉移到無菌1.5mL離心管中，編號備用。

8.2.7設施設備

用滅菌棉拭子拭取實驗動物設施設備出風口初效濾膜表面約5cm2沉積物，將拭子置入滅菌15mL離

心管，加入3mL滅菌PBS，浸泡5min～10min，充分混勻，取出棉拭子，將離心管于4℃，8000g離

心5min，取上清液轉入另一無菌離心管中，編號備用。

8.2.8樣本的存放

采集或處理的樣本在2℃～8℃條件下保存應不超過24h，若需長期保存，須放置于-80℃冰箱，

但應避免反復凍融。

8.2.9采樣廢棄物處理

采樣結束，動物尸體應使用生物安全垃圾袋包裝完整，高壓滅菌后交由醫(yī)療垃圾處理單位進行處理，

采樣器材應使用消毒液浸泡或高壓滅菌消毒，并做好實驗臺面及采樣室的消毒。

核酸提取

8.3.1取50μL～100μL的樣本至1.5mL或2mL離心管中，加20μL蛋白酶K，用PBS補加至220

μL。

8.3.2加入200μL緩沖液AL，渦旋震蕩充分混勻，56℃孵育10min。

8.3.3加入200μL的無水乙醇，渦旋震蕩充分混勻。

8.3.4移取第8.3.3條制備的混合液至離心柱上，離心柱放在2mL收集管上，≥6000g離心1min。

棄收集管/液。

8.3.5離心柱放至新的2mL收集管上，加500μL緩沖液AW1，≥6000g離心1min。棄收集管/液。

8.3.6離心柱放至新的2mL收集管上，加500μL緩沖液AW2，20000g離心3min。棄收集管/液。

8.3.7將離心柱放在一個新的1.5mL離心管上，吸200μL的緩沖液AE在吸附膜上，室溫孵育1min，

≥6000g離心1min。收獲提取DNA液。

8.3.8取2μL提取的DNA樣本使用微量核酸定量儀測定提取DNA濃度。

8.3.9制備好的DNA應盡快進行下一步PCR反應，若暫時不能進行PCR反應，應于-20℃冰箱保存?zhèn)?/p>

用。

注：該DNA提取方法是針對DNA提取試劑盒DNeasyBlood&TissueKit給出的應用實例，可使用其他類似的DNA提取

試劑盒進行，提取方法可做相應調整。

普通PCR

8.4.1PCR反應體系

PCR反應體系見表1。反應液的配制在冰上操作，每次反應同時設計陽性對照、陰性對照和空白對照，

其中陽性對照以含有陽性病原菌的組織或培養(yǎng)物提取的核酸作為陽性對照模板，其中陰性對照以不含

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DB44/T2337—2021

有陽性病原菌的樣本核酸（可以是正常動物組織或正常培養(yǎng)物）作為陰性對照模板，空白對照即為不加

模板對照（NoTemplateControl，NTC），即在反應中用水來代替模板。

表1PCR反應體系配制表

反應組份用量/μL終濃度

2×PremixTaqMix（plusdye）101×

Forwardprimer（10μmol/L）0.80.4μmol/L～1μmol/L

Reverseprimer（10μmol/L）0.80.4μmol/L～1μmol/L

DNA模板2<250ng

PCR用水6.4/

總體積20/

注1：可使用其他類似的PCR試劑進行，反應體系和反應參數可做相應調整。

注2：反應體系可按各反應組份終濃度配比按比例增加或減少。

8.4.2PCR反應參數

PCR反應參數見表2。

表2PCR反應參數

步驟溫度時間循環(huán)數

預變性95℃5min1

變性98℃10s

退火50℃～60℃30s30

延伸72℃1min/kb

注：各引物退火溫度及擴增條參照附錄B可作相應調整。

8.4.3PCR產物電泳分析

將適量50×TAE稀釋成1×TAE溶液，配制含核酸染料溴化乙錠的1.5%瓊脂糖凝膠。PCR反應結束后，

取10μLPCR產物在1.5%瓊脂糖凝膠進行電泳，以DNA分子量作參照。電壓大小根據電泳槽長度來確定，

一般控制在3V/cm～5V/cm，當上樣染料移動到凝膠邊緣時關閉電源。電泳完成后在凝膠成像系統(tǒng)拍照

記錄電泳結果。

實時熒光PCR

8.5.1實時熒光PCR反應體系

實時熒光PCR反應體系見表3。反應液的配制在冰上操作，每次反應同時設計陽性對照、陰性對照和

空白對照，其中陽性對照以含有陽性病原菌的組織或細胞培養(yǎng)物提取的核酸作為陽性對照模板，其中陰

性對照以不含有陽性病原菌的樣本核酸（可以是正常動物組織或正常細胞培養(yǎng)物）作為陰性對照模板，

空白對照即為不加模板對照（NoTemplateControl，NTC），即在反應中用水來代替模板。

5

DB44/T2337—2021

表3實時熒光PCR反應體系配制表

反應組份用量/μL終濃度

2×PremixExTaqMix101×

ForwardPrimer（10μmol/L）0.40.2μmol/L～1μmol/L

ReversePrimer（10μmol/L）0.40.2μmol/L～1μmol/L

Probe（10μmol/L）0.80.4μmol/L～1μmol/L

Rox（50×）0.2/

DNA模板2100ng

PCR用水6.2/

總體積20/

注1：試劑Rox只在具有Rox熒光校正通道的實時熒光PCR儀上進行擴增時添加，否則用水

補齊。

注2：可使用其他類似的實時熒光PCR試劑盒進行，反應體系和反應參數可做相應調整。

注3：反應體系可按各反應組份終濃度配比按比例增加或減少。

8.5.2實時熒光PCR反應參數

實時熒光PCR反應參數見表4。反應結束后，根據收集的熒光曲線和Ct值判定結果。

表4實時熒光PCR反應參數

步驟溫度時間采集熒光信號循環(huán)數

預變性95℃30s1

否

變性95℃5s

40

退火，延伸60℃34s是

9結果

普通PCR

9.1.1質控標準

在陽性、陰性、空白對照成立的條件下，即陽性對照的擴增產物經電泳分析可見到目的擴增條帶（條

帶大小參見附錄A），陰性對照及空白對照的擴增產物無任何條帶，可進行結果判定。

9.1.2結果判定

9.1.2.1樣本經瓊脂糖凝膠電泳，在凝膠成像儀上觀察到特定大小的目的擴增條帶，判定為該病原菌

核酸陽性；

9.1.2.2樣本經瓊脂糖凝膠電泳，在凝膠成像儀上未觀察到特定大小的目的擴增條帶，判定為該病原

菌核酸陰性。

實時熒光PCR

6

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9.2.1結果分析和條件設定

直接讀取儀器結果，基線和閾值設定原則根據儀器的噪聲情況進行調整，以閾值線剛好超過正常陰

性樣本擴增曲線的最高點為準。

9.2.2質控標準

9.2.2.1空白對照無Ct值，并且無熒光擴增曲線，擴增曲線為水平線或Ct值小于40。

9.2.2.2陰性對照無Ct值，并且無熒光擴增曲線，擴增曲線為水平線或Ct值小于40。

9.2.2.3各病原菌陽性對照Ct值≤35，并且有明顯的熒光擴增曲線，則表明反應體系運行正常，否則

此次試驗無效，需重新進行實時熒光PCR擴增。

9.2.3結果判定

9.2.3.1若待檢樣本無熒光擴增曲線，則判定該病原菌核酸陰性。

9.2.3.2若待檢樣本有熒光擴增曲線，且Ct值≤35時，則判斷該病原菌核酸陽性。

9.2.3.3若待檢樣本Ct值介于35和40之間時，應重新進行實時熒光PCR。重新試驗后，若Ct值≥

40時，則判定該病原菌核酸陰性。重新試驗后的Ct值仍介于35和40之間，則判定該病原菌核酸可疑

陽性，需進一步進行序列測定。

序列測定

必要時，可取待檢樣本擴增出的陽性PCR產物進行核酸序列測定，序列結果與已公開發(fā)表的參考菌

株基因序列進行比對，序列同源性在99%以上，可確診待檢樣本某種病原菌核酸陽性，否則判定某種病

原菌核酸陰性。

10防止交叉污染的措施

按照GB/T19495.2中的要求執(zhí)行。

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A

A

附錄A

（規(guī)范性）

溶液的配制

A.10.02mol/LpH7.2磷酸鹽緩沖液（PBS）的配制

A.1.1A液

0.2mol/L磷酸二氫鈉溶液：稱取磷酸二氫鈉（NaH2PO4?H2O）27.6g，先加適量去離子水溶解，最

后定容至1000mL，混勻。

A.1.2B液

0.2mol/L磷酸氫二鈉溶液：稱取磷酸氫二鈉NaH2PO4·7H2O53.6g（或Na2HPO4·12H2O71.6g或

Na2HPO4·2H2O35.6g），先加適量去離子水溶解，最后定容至1000mL，混勻。

A.1.30.02mol/LpH7.2磷酸鹽緩沖液（PBS）的配制

取A液14mL，B液36mL，加氯化鈉（NaCl）8.5g，加800mL無離子水溶解稀釋，用HCl調pH至7.2，

最后定容至1000mL，經121℃高壓滅菌15min，冷卻備用。

A.250×TAE電泳緩沖液

A.2.10.5mol/L乙二銨四乙酸二鈉（EDTA）溶液（pH8.0）

乙二銨四乙酸二鈉（EDTA-Na2?H2O）18.61g

滅菌去離子水80mL

5mol/L氫氧化鈉溶液調pH至8.0

滅菌去離子加至100mL，121℃，15min滅菌備用。

A.2.250×TAE電泳緩沖液配制

三羥甲基氨基甲烷（Tris）242g

冰乙酸57.1mL

0.5mol/LEDTA溶液，pH8.0l00mL

滅菌去離子加至1000mL，121℃，15min滅菌備用。

用時用滅菌去離子水稀釋至l×使用。

A.3溴化乙錠（EB）溶液（10μg/μL）

溴化乙錠20mg

滅菌去離子水20mL

A.4含0.5μg/mL溴化乙錠的1.5%瓊脂糖凝膠的配制

瓊脂糖1.5g

1×TAE電泳緩沖液加至l00mL

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DB44/T2337—2021

混合后加熱至完仝融化,待冷至50℃～55℃時，加溴化乙錠（EB）溶液5μL，輕輕晃動搖勻，避

免產生氣泡，將梳子置人電泳槽中，然后將瓊脂糖溶液倒人電泳板上，凝膠適宜厚度為3mm～5mm，需

確認在梳齒下或梳齒間沒有氣泡，待凝固后取下梳子備用。

9

DB44/T2337—2021

B

B

附錄B

（規(guī)范性）

引物及探針序列

針對實驗動物常見病原菌16sRNA或其他保守基因序列設計特異引物進行PCR擴增；普通PCR引物序列

見表B.1，實時熒光PCR引物和探針序列見表B.2。

表B.1普通PCR引物

產物大小退火溫

病原菌引物名稱引物序列（5′→3′）

（bp）度（℃）

肺支原體

Mpul-FAGCGTTTGCTTCACTTTGAA

（Mycoplasma26655

pulmonis）Mpul-RGGGCATTTCCTCCCTAAGCT

螺桿菌屬H-FCTATGACGGGTATCCGGC

（Helicobactergenus）78055

H-RCTCACGACACGAGCTGAC

肝螺桿菌

Hh-FATGGGTAAGAAAATAGCAAAAAGATTGCAA

（Helicobacter70555

hepaticus）Hh-RCTATTTCATATCCATAAGCTCTTGAGAATC

膽汁螺桿菌Hb-FATGGAACAGATAAAGATTTTAAAGCAACTTCAG

（Helicobacterbilis）43555

Hb-RCTATGCAAGTTGTGCGTTAAGCAT

嚙齒類螺桿菌

Hr-FTTGTGAAATGGAGCAAATCTTAAAAACT

（Helicobacter19155

rodentium）Hr-RTAGCCAGTTTGGCATTCC

小家鼠螺桿菌

Hm-FATGACAAAAAAATATTCTTTCACAAAACTATTCATTGGT

(Helicobacter80755

muridarum)Hm-RTTTATTTTAGATTCCATTTAACTGCTAAATCATCAATAGT

盲腸螺桿菌

Ht-FAGGGACTCTTAAATATGCTCCTAGAGT

（Helicobacter12255

typhlonius）Ht-RATTCATCGTGTTTGAATGCGTCAA

巴斯德桿菌屬PastFATGGGAGTGGGTTGTACCA

（Pasteurellagenus）165~17058

PastRCAATCTGTGTGRACACTTRC

Heyl型嗜肺巴斯德桿菌

PastFATGGGAGTGGGTTGTACCA

（Pasteurella.32658

pneumotropicaHey1）HeylRTTGCAGATACTTGCCCTTAC

Jawetz型嗜肺巴斯德桿菌

PastFATGGGAGTGGGTTGTACCA

（Pasteurella45158

pneumotropicaJawetz）JawRGGCATCCTAAAATACCCATCC

10

DB44/T2337—2021

表B.1普通PCR引物（續(xù)）

產物大退火溫度

病原菌引物名稱引物序列（5′→3′）小（bp）（℃）

鼠放線桿菌A.m—FAAGCGGTCGGTTTTAGCTGT

（Actinobacillusmuris）25558

A.m-RAAGCAGTTGGTTTTGGCTGT

肺炎鏈球菌

SP-FGGCTTAGAGGCTGTTCGT

（Streptococcus70158

pneumoniae）SP-RATCTCACCGTCTGTATAGA

牛棒狀桿菌

CB-FGGTGTGGGGATCTTCCACGAT

（Corynebacterium22355

bovis）CB-RACCACCTGTGAACAAGCCCA

鼠傷寒沙門氏菌

ST-FTCGCACCGTCAAAGGAACCGTAAAGC

（Salmonella33158

typhimurium）ST-RGCATTATCGATCAGTACCAGCCGTCT

金黃色葡萄球菌

Sau-FGGATGGCTATCAGTAATGTTTCG

（Staphylococcus24758

aureus）Sau-RTTAACCGTATCACCATCAATCG

鼠棒狀桿菌

CK-FGCAACGCGAAGAACCTTACC

（Corynebacterium20058

kutscheri）CK-RCCCGGCAGTCTCTCATGAGT

綠膿桿菌

Pseu-FGACAACGCCCTCAGCATCACCAGC

（Pseudomonas39760

aeruginosa）Pseu-RCGCTGGCCCATTCGCTCCAGCGCT

肺炎克雷伯桿菌

KP-FTGGCCCGCGCCCAGGGTTCGAAA

（Klebsiella36855

pneumoniae）KP-RGATGTCGTCATCGTTGATGCCCAG

腸出血性大腸埃希氏菌O157-FATTGCGCTGAAGCCTTTG

O157：H7（Escherichia49955

coliO157:H7）O157-RCGAGTACATTGGCATCGTG

偽欣氏鮑特桿菌

Hinz-FCGTTCCGGTTGCCCAGAAG

（Bordetella31862

pseudohinzii）Hinz-RGCCTTCGGCGGTCTTGTTGGTC

支氣管鮑特桿菌

Fla-FAGGCTCCCAAGAGAGAAAGGCTT

（Bordetella23758

bronchiseptica）Fla-RTGGCGCCTGCCCTATC

志賀氏菌ipaH-FCCTTGACCGCCTTTCCGATAC

（Shigellaspp.）61158

ipaH-RCAGCCACCCTCTGAGAGTACT

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DB44/T2337—2021

表B.1普通PCR引物（續(xù)）

產物大退火溫度

病原菌引物名稱引物序列（5′→3′）

?。╞p）（℃）

泰澤病原體TY-FGTGCTAGGTGTTGGGAAG

（Tyzzerorganism）19655

TY-RTACTTTACGTAGCCTGTCAA

雞毒支原體MG-FAATGATGCGACTAAACCAA

（Mycoplasma40855

MG-RTCCACCCACATACCCAA

gallisepticum）

雞滑液囊支原體MS-FCGGTGATAACCCAACAGA

68855

（MycoplasmaSynoviae）

MS-RACCCCTCCTTAATACGCT

注：簡并堿基Y：T/C，R：A/G。

表B.2實時熒光PCR擴增引物和探針

病原菌引物和探針名稱引物和探針序列（5′→3′）

ForwardprimerGGAAATGCCCTAAGTATGACGG

肺支原體

ReverseprimerCGGATAACGCTTGCACCCTA

（Mycoplasmapulmonis）

ProbeFAM-CCTTGTCAGAAAGCACCGGCTAACTATGTG-BHQ-1

肝螺桿菌ForwardprimerGGCAATATTAACTTTGATATGG

（HelicobacterReverseprimerTTGGCATTAAACCCTTTG

hepaticus）ProbeFAM–TGCTACTCCTGATATGATGGCTCTTG-BHQ-1

ForwardprimerTACCACTGGAATGTAAAAGGCA

膽汁螺桿菌

ReverseprimerCTTCTTTTAGCGTTACATACGGAGT

（Helicobacterbilis）

ProbeFAM–CCACAAGTCCATGCGGCAACAGAAG-BHQ-1

小家鼠螺桿菌Forwardpr